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发表于 2022-4-5 15:22:38 | 查看: 2322| 回复: 0
本帖最后由 生信喵 于 2022-4-5 15:59 编辑

一、利用 kmer 估计基因组大小
      要想估计基因组的大小,也就是整条基因组的长度,我们把这个值设为大 G。那么测序的所有碱基数可以计算出来,将所有 reads 的碱基加起来就可以,为大 S。用所有碱基数除以每个碱基的平均覆盖深度 D,碱基总数除以测序深度,那么就可以得到基因组的长度了。所以,要想估计基因组大小,必须计算出每个位点被覆盖的平均深度,因为我们已经有了总碱基数S。但是这个深度无法直接计算出来,所以,我们通过 kmer 的深度,来推测测序的深度,进而求出基因组大小。那么就是要推测出 kmer 深度与测序深度之间的关系,下面我们来看一下如何通过 kmer 的深度来计算测序的深度。
      看下面的公式。
      我们设 G 为实际基因组大小,k 为 kmer 长度,l 为 reads 长度,n_k为所有 kmer 的个数,n_b为所有碱基的个数,d_k为 kmer 期望深度,d_b为碱基期望深度,其中n_kd_k皆可以统计出来。因为 Kmer 深度符合泊松分布,所以 d_k 即为 Kmer 深度的平 均值,而整个基因组约可产生 G 个 Kmer,这里面忽略边界效应。最终我们就得到了如下的公式。

G = n_k / d_k = n_b / d_b ;

      其中,只有 dk 一个未知量,我们只要得到 kmer 的深度就可以推测出基因组的大小。kmer 的深度,通过统计就可以得到,这样就得到了基因组的大小。


二、实战
      参考文章PMID:31483244,细菌基因组
      文章20个样本,每个样本分别使用二代、pacbio和纳米孔,总共60个sra。
2.1 准备数据
  1. mkdir data;cd data;
  2. #1 下载参考序列
  3. #基因组下载
  4. #Klebsiella pneumoniae MGH78578
  5. #基因组: NC_009648.1  https://www.ncbi.nlm.nih.gov/nuccore/NC_009648.1/
  6. #质粒: NC_009649.1 https://www.ncbi.nlm.nih.gov/nuccore/NC_009649
  7. efetch -db nuccore -format fasta -id NC_009648.1 > MGH78578.fasta
  8. efetch -db nuccore -format fasta -id NC_009649 >>MGH78578.fasta
  9. #Escherichia coli CFT073
  10. efetch -db nuccore -format fasta -id NC_004431.1 >CFT073.fasta
  11. #下载测序数据#https://www.ncbi.nlm.nih.gov/bioproject/PRJNA422511
  12. #下载illumina数据prefetch SRR8482586 -O ./ -o illumina.sra
  13. #wget https://sra-downloadb.be-md.ncbi.nlm.nih.gov/sos3/sra-pub-run-21/SRR8482586/SRR8482586.1 -O illumina.sra
  14. #下载不到,我去本地迅雷下载了,传回服务器改名
  15. mv SRR8482586.1 illumina.sra
  16. chmod u+x illumina.sra
  17. fastq-dump --split-files --gzip illumina.sra
  18. #下载pacbio数据prefetch SRR8494912 -O ./ -o pacbio.sra
  19. mwget https://sra-downloadb.be-md.ncbi.nlm.nih.gov/sos3/sra-pub-run-21/SRR8494912/SRR8494912.1
  20. mv SRR8494912.1 pacbio.sra
  21. chmod u+x pacbio.sra
  22. fasterq-dump pacbio.sra
  23. gzip pacbio.fastq
  24. #下载nanopore数据prefetch SRR8494939 -O ./ -o nanopore.sra
  25. wget https://sra-downloadb.be-md.ncbi.nlm.nih.gov/sos3/sra-pub-run-20/SRR8494939/SRR8494939.1
  26. mv SRR8494939.1 nanopore.sra
  27. chmod u+x nanopore.sra
  28. fasterq-dump nanopore.sra
  29. gzip nanopore.fastq
  30. # 查看数据
  31. less -S illumina_1.fastq.gz
  32. less -S pacbio.fastq.gz
  33. less -S nanopore.fastq.gz
  34. rm -f *.sra
复制代码

2.2 质控
  1. #fastqc质控
  2. mkdir qc
  3. fastqc -f fastq -o qc illumina_1.fastq.gz illumina_2.fastq.gz

  4. #利用fastp进行数据过滤  
  5. fastp -i illumina_1.fastq.gz -I illumina_2.fastq.gz -o clean.1.fq.gz -O clean.2.fq.gz -D -z 4 -q 20 -u 30 -n 10 -f 20 -t 10 -F 20 -T 10 -h clean.html
  6. #过滤完在质控一遍
  7. fastqc -f fastq -o qc clean.1.fq.gz clean.2.fq.gz
复制代码

2.3 jellyfish 统计 kmer
  1. 安装jellyfish和genomescope2
  2. cd ~/biosoft
  3. wget http://www.cbcb.umd.edu/software/jellyfish/jellyfish-1.1.11.tar.gz
  4. tar zxvf jellyfish-1.1.11.tar.gz
  5. mkdir jellyfish
  6. ./configure --prefix=$PWD/../jellyfish
  7. make -j 8
  8. make install
  9. /share/home/xiehs/biosoft/jellyfish/bin写入环境变量

  10. 安装genomescope2
  11. git clone https://github.com/tbenavi1/genomescope2.0.git
  12. cd genomescope2.0/
  13. mkdir ~/R_libs
  14. echo "R_LIBS=~/R_libs/" >> ~/.Renviron #有写入权限
  15. Rscript install.R
复制代码
  1. #  kmer估计基因组大小
  2. mkdir 34.kmer;cd 34.kmer/
  3. ln -s ../data/illumina_1.fastq.gz .
  4. ln -s ../data/illumina_2.fastq.gz .
  5. #jellyfish统计kmer
  6. #不支持压缩格式
  7. jellyfish count -m 15 -s 2G -o kmer15.count  -s 2G -C <(zcat clean.1.fq.gz )
  8. jellyfish stats kmer15.count_0 -o kmer15.stats
  9. jellyfish histo kmer15.count_0 > kmer15.histo

  10. /share/home/xiehs/biosoft/genomescope2.0写入环境变量

  11. #genomescope2估计基因组大小
  12. genomescope2 -i kmer15.histo -o gscope -p 1 -k 15
复制代码
      gscope文件夹中linear_plot.png就可以看到基因组大小约5.989m
      
      transformed_linear_plot.png调整后的,还有取对数值的。
      以上对illumina1号测序,取kmer15bp的参数比较出。MGH78578.fasta的大小是5.49m
      我们可以更改kmer为17,用illumina2号再跑一遍流程,能对回5.4最好。一般用二代的估算。也可以用我们下载的pacbio和纳米孔。


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